REKLAMA
Dziennik Ustaw - rok 2017 poz. 1573
ROZPORZĄDZENIE
MINISTRA ROLNICTWA I ROZWOJU WSI1)
z dnia 21 lipca 2017 r.
w sprawie wymagań w zakresie wytwarzania i jakości materiału rozmnożeniowego i materiału nasadzeniowego roślin warzywnych i ozdobnych oraz sadzonek winorośli, a także sposobu oznaczania partii materiału rozmnożeniowego i materiału nasadzeniowego roślin warzywnych i ozdobnych oraz sadzonek winorośli2)
Na podstawie art. 72a ustawy z dnia 9 listopada 2012 r. o nasiennictwie (Dz. U. z 2017 r. poz. 633) zarządza się, co następuje:
§ 1. [Zakres regulacji]
1) wymagania w zakresie wytwarzania i jakości materiału rozmnożeniowego i materiału nasadzeniowego roślin warzywnych i ozdobnych oraz sadzonek winorośli;
2) sposób oznaczania partii materiału rozmnożeniowego i materiału nasadzeniowego roślin warzywnych i roślin ozdobnych oraz sadzonek winorośli.
§ 2. [Wymagania w zakresie wytwarzania i jakości materiału rozmnożeniowego i materiału nasadzeniowego roślin warzywnych]
§ 3. [Wymagania w zakresie wytwarzania i jakości materiału rozmnożeniowego i materiału nasadzeniowego roślin ozdobnych]
§ 4. [Wymagania w zakresie wytwarzania i jakości sadzonek winorośli]
§ 5. [Oznaczanie partii materiału rozmnożeniowego i materiału nasadzeniowego roślin warzywnych i ozdobnych oraz partie sadzonek winorośli]
§ 6. [Ocena polowa oraz ocena cech zewnętrznych]
§ 7. [Wejście w życie]
Minister Rolnictwa i Rozwoju Wsi: K. Jurgiel
1) Minister Rolnictwa i Rozwoju Wsi kieruje działem administracji rządowej - rolnictwo, na podstawie § 1 ust. 2 pkt 1 rozporządzenia Prezesa Rady Ministrów z dnia 17 listopada 2015 r. w sprawie szczegółowego zakresu działania Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi (Dz. U. poz. 1906).
2) Niniejsze rozporządzenie wdraża w zakresie swojej regulacji:
1) dyrektywę Komisji 93/49/EWG z dnia 23 czerwca 1993 r. określającą wykazy wskazujące warunki, jakie mają zostać spełnione przez materiał rozmnożeniowy roślin ozdobnych oraz rośliny ozdobne, zgodnie z dyrektywą Rady 91/682/EWG (Dz. Urz. WE L 250 z 07.10.1993, str. 9, Dz. Urz. WE L 241 z 29.08.1994, str. 332, Dz. Urz. WE L 164 z 30.06.1999, str. 78; Dz. Urz. UE Polskie wydanie specjalne, rozdz. 3, t. 15, str. 91);
2) dyrektywę Komisji 93/61/EWG z dnia 2 lipca 1993 r. określającą wykazy wskazujące warunki, jakie mają być spełnione przez materiał rozmnożeniowy i nasadzeniowy warzyw, inny niż nasiona, zgodnie z dyrektywą Rady 92/33/EWG (Dz. Urz. WE L 250 z 07.10.1993, str. 19; Dz. Urz. UE Polskie wydanie specjalne, rozdz. 3, t. 15, str. 101).
3) Niniejsze rozporządzenie było poprzedzone rozporządzeniem Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 15 lipca 2015 r. w sprawie szczegółowych wymagań dotyczących wytwarzania i jakości roślin sadowniczych, materiału szkółkarskiego CAC, materiału rozmnożeniowego i materiału nasadzeniowego roślin warzywnych i ozdobnych oraz sadzonek winorośli, a także metod oceny polowej, pobierania prób i oceny laboratoryjnej oraz oceny tożsamości materiału siewnego kategorii elitarny lub kwalifikowany roślin sadowniczych (Dz. U. poz. 1124), które na podstawie art. 10 ustawy z dnia 16 grudnia 2016 r. o zmianie ustawy o nasiennictwie oraz ustawy o ochronie roślin (Dz. U. poz. 2246) traci moc z dniem wejścia w życie niniejszego rozporządzenia.
Załączniki do rozporządzenia Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi
z dnia 21 lipca 2017 r. (poz. 1573)
Załącznik nr 1
WYMAGANIA W ZAKRESIE WYTWARZANIA I JAKOŚCI MATERIAŁU ROZMNOŻENIOWEGO I MATERIAŁU NASADZENIOWEGO ROŚLIN WARZYWNYCH
1. Wymagania dotyczące wytwarzania materiału rozmnożeniowego i materiału nasadzeniowego roślin warzywnych:
1) w trakcie wytwarzania materiał rozmnożeniowy i materiał nasadzeniowy wykazujący widoczne oznaki lub objawy występowania organizmów szkodliwych lub chorób wymienionych w ust. 2 pkt 6 poddaje się zabiegom chemicznym mającym na celu usunięcie tych organizmów lub chorób, a jeżeli zabiegi te okażą się nieskuteczne – usuwa się ten materiał;
2) podczas uprawy materiał rozmnożeniowy i materiał nasadzeniowy utrzymuje się w oddzielnych partiach stanowiących zbiór jednostek materiału rozmnożeniowego lub materiału nasadzeniowego, który można zidentyfikować na podstawie ich jednorodnych cech;
3) partię, o której mowa w pkt 2, można utworzyć z materiału rozmnożeniowego i materiału nasadzeniowego pochodzącego z różnych plantacji, jeżeli dostawca posiada dokumentację dotyczącą składu tej partii oraz pochodzenia poszczególnych jej składników;
4) materiał rozmnożeniowy i materiał nasadzeniowy może być oferowany do sprzedaży i sprzedawany jako pojedyncze rośliny, w wiązkach, doniczkach, na paletach i multiplatach lub w pojemnikach z produkcji in vitro.
2. Wymagania dotyczące jakości materiału rozmnożeniowego i materiału nasadzeniowego roślin warzywnych:
Materiał rozmnożeniowy i materiał nasadzeniowy powinien:
1) być praktycznie wolny od wad mogących obniżyć jego jakość;
2) charakteryzować się odpowiednią użytecznością, żywotnością oraz mieć właściwe rozmiary i znajdować się w takiej fazie rozwoju, która zapewnia jego przydatność jako materiału rozmnożeniowego i materiału nasadzeniowego;
3) zachowywać odpowiednią proporcję między korzeniami, łodygami i liśćmi;
4) mieć odpowiednią tożsamość, czystość rodzajową, gatunkową lub odmianową;
5) być wolny od organizmów kwarantannowych;
6) być praktycznie wolny od następujących organizmów szkodliwych mających wpływ na jakość materiału rozmnożeniowego i materiału nasadzeniowego:
| Rodzaj lub gatunek | Organizmy szkodliwe i choroby |
| – Allium ascalonicum | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – Delia spp. – Ditylenchus dipsaci – przylżeńce, w szczególności Thrips tabaci |
| grzyby: – Botrytis spp. – Peronospora destructor – Sclerotium cepivorum | |
| wirusy i organizmy wirusopodobne: – wszystkie, w szczególności wirus żółtej karłowatości cebuli | |
| – Allium cepa | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – Delia spp. – Ditylenchus dipsaci – Meloidogyne spp. – przylżeńce, w szczególności Thrips tabaci |
| bakterie: – Pseudomonas spp. | |
| grzyby: – Botrytis spp. – Fusarium oxysporum f. sp. cepae – Peronospora destructor – Sclerotium cepivorum | |
| wirusy i organizmy wirusopodobne: – wszystkie, w szczególności wirus żółtej karłowatości cebuli | |
| – Allium futulosum | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – Delia spp. – Ditylenchus dipsaci – przylżeńce, w szczególności Thrips tabaci |
| grzyby: – Sclerotium cepivorum | |
| wirusy i organizmy wirusopodobne: – wszystkie | |
| – Allium porrum | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – Delia spp. – Ditylenchus dipsaci – przylżeńce |
| bakterie: – Pseudomonas spp. | |
| grzyby: – Alternaria porri – Fusarium culmorum – Phytophthora porri – Scelerotium cepivorutn | |
| wirusy i organizmy wirusopodobne: – wszystkie, w szczególności wirus żółtej pasiastości czosnku | |
| – Allium sativum | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – Aceria tulipan – Delia spp. – Ditylenchus dipsaci – przylżeńce |
| bakterie: – Pseudomonas fluorescens | |
| grzyby: – Sclerotium cepivorum | |
| wirusy i organizmy wirusopodobne: – wszystkie, w szczególności wirus żółtej karłowatości cebuli | |
| – Apium graveolens | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – Acidia Heraklei – Ligus spp. – Psila rosae – przylżeńce, w szczególności Frankliniella occidentalis i Thrips tabaci |
| bakterie: – Erwinia carotovora podp. carotovora – Pseudomonas syringae pv. apii | |
| grzyby: – Fusarium oxysporum f. sp. apii – Phoma apiicolaythium spp. – Sclerotinia sclerotiorum – Septoria apiicola | |
| wirusy i organizmy wirusopodobne: – wszystkie, w szczególności wirus mozaiki selera i wirus mozaiki ogórka | |
| – Asparagus officinalis | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – Brachyorynella asparagi – Hypopta caestrum – Platyparea poecyloptera |
| grzyby: – Fusarium spp. – Rhizoctonia violacea | |
| wirusy i organizmy wirusopodobne: – wszystkie | |
| – Beta vulgaris | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – Pegomyia betae |
| grzyby: – Photna betae | |
| wirusy i organizmy wirusopodobne: – wszystkie, w szczególności wirus nekrotycznej żółtaczki nerwów buraka | |
| – Brassica oleracea | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – mącznikowate – mszycowate – Heterodera spp. – łuskoskrzydłe, w szczególności Pieris brassicae – przylżeńce, w szczególności Frankliniella occidentalis |
| bakterie: – Pseudomonas syringae pv. maculicola – Xanthomonas campestris pv.campestris | |
| grzyby: – Alternaria brassicae – Mycosphaerella spp. – Phoma lingam – Plasmodiophora brassicaeythium spp. – Rhizoctonia solani | |
| wirusy i organizmy wirusopodobne: – wszystkie, w szczególności wirus mozaiki kalafiora | |
| – Brassica pekinensis | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – mszycowate – łuskoskrzydłe, w szczególności Pieris brassicae |
| bakterie: – Erwinia carotovora – Xanthomonas campestris pv. campestris | |
| grzyby: – Alternaria brassicae – Botrytis cinerea – Mycosphaerella spp. – Phoma lingam – Plasmodiophora brassicae – Sclerotinia spp. | |
| wirusy i organizmy wirusopodobne: – wszystkie, w szczególności tospowirusy | |
| – Capsicum annuum | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – mącznikowate – Leptinotarsa decemlineata – Ostrinia nubilalis – Phthorimaea operculella – przędziorki – przylżeńce, w szczególności Frankliniella occidentalis |
| grzyby: – Leveillula taurica – Pyrenochaeta lycopersici – Pythium spp. – Phytophthora capsici – Verticillium albo atrum – Verticillium dahlia | |
| wirusy i organizmy wirusopodobne: – wszystkie, w szczególności wirus mozaiki ogórka, wirus mozaiki pomidora, wirus łagodnej pstrości papryki i wirus mozaiki tytoniu | |
| – Cichorium endiva | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – Aphididae – przylżeńce, w szczególności Frankliniella occidentalis |
| grzyby: – Botrytis cinerea – Erysiphe cichoriacearum – Sclerotinia spp. | |
| wirusy i organizmy wirusopodobne: – wszystkie, w szczególności wirus zachodniej żółtaczki buraka i wirus mozaiki sałaty | |
| – Cichorium intybus | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – mszycowate – Napomyza cichorii – Apion assimile |
| bakterie: – Erwinia carotovora – Erwinia chrysanthemi – Pseudomonas marginalis | |
| grzyby: – Phoma exigua – Phytophthora erythroseptica – Pythium spp. – Sclerotinia sclerotiorum | |
| – Citrullus lanatus | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – mącznikowate – mszycowate – Meloidogyne spp. – Polyphagotarsonemus latus – Tetranychus spp. – przylżeńce, w szczególności Frankliniella occidentalis |
| grzyby: – Colletotrichum lagenarium | |
| wirusy i organizmy wirusopodobne: – wszystkie, w szczególności wirus mozaiki arbuza | |
| – Cucumis melo | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – mącznikowate – mszycowate – Meloidogyne spp. – Polyphagotarsonemus latus – Tetranychus spp. – przylżeńce, w szczególności Frankliniella occidentalis |
| bakterie: – Pseudomonas synringae pv. lachrymans | |
| grzyby: – Colletotrichum lagenarium – Fusarium spp. – Pythium spp. – Sphaerotheca fuliginea – Verticillium spp. | |
| wirusy i organizmy wirusopodobne: – wszystkie, w szczególności wirus zielonej cętkowatości ogórka, wirus mozaiki ogórka i wirus mozaiki dyni olbrzymiej | |
| – Cucumis sativus | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – mącznikowate – mszycowate – Delia platura – Meloidogyne spp. – Polyphagotarsonemus latus – Tetranychus spp. – przylżeńce, w szczególności Frankliniella occidentalis |
| bakterie: – Pseudomonas syringae pv. lachrymans | |
| grzyby: – Fusarium spp. – Phytophthora spp. – Pseudoperonospora cubensis – Pythium spp. – Rhizoctonia spp. – Sphaerotheca fuliginea – Verticillium spp. | |
| wirusy i organizmy wirusopodobne: – wszystkie | |
| – Cucurbita maxima | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – mącznikowate – mszycowate – Meloidogyne spp. – Polyphagotarsonemus latus – Tetranychus spp. – przylżeńce, w szczególności Frankliniella occidentalis |
| wirusy i organizmy wirusopodobne: – wszystkie | |
| – Cucrbita pepo | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – mącznikowate – mszycowate – Meloidogyne spp. – Polyphagotarsonemus latus – Tetranychus spp. – przylżeńce, w szczególności Frankliniella occidentalis |
| bakterie: – Pseudomonas syringae pv. lachrymans | |
| grzyby: – Fusarium spp. – Sphaerotheca fuliginea – Verticillium spp. | |
| wirusy i organizmy wirusopodobne: – wszystkie, w szczególności wirus mozaiki ogórka, wirus mozaiki dyni olbrzymiej, wirus żółtej mozaiki cukinii i tospowirusy | |
| – Cynara cardunculus i Cynara scolymus | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – mącznikowate – mszycowate – przylżeńce |
| grzyby: – Bremia lactucae – Leveillula taurica f. sp. cynara – Pythium spp. – Rhizoctonia solani – Sclerotium rolfsii – Sclerotinia sclerotiorum – Verticillium dahliae | |
| wirusy i organizmy wirusopodobne: – wszystkie | |
| – Foeniculum vulgare | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – mącznikowate – mszycowate – przylżeńce |
| bakterie: – Erwinia carotovora subsp. carotovora – Pseudomonas marginalis pv. marginalis | |
| grzyby: – Cercospora foeniculi – Phytophthora syringae – Sclerotinia spp. | |
| wirusy i organizmy wirusopodobne: – wirus mozaiki selera | |
| – Lactuca sativa | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – mszycowate – Meloidogyne spp. – przylżeńce, w szczególności Frankliniella occidentalis |
| grzyby: – Botrytis cinerea – Bremia lactucae – Pythium spp. | |
| wirusy i organizmy wirusopodobne: – wszystkie, w szczególności wirus pogrubienia nerwów sałaty, wirus mozaiki sałaty i pierścieniowa nekroza sałaty | |
| – Lycopersicon lycopersicum | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – mszycowate – mącznikowate – Hauptidia maroccana – Meloidogyne spp. – Tetranychus spp. – przylżeńce, w szczególności Frankliniella occidentalis – Vasates lycopersici |
| bakterie: – Pseudomonas syringae pv. tomato | |
| grzyby: – Alternaria solani – Cladosporium fulvum – Colletotrichum coccoides – Didymella lycopersici – Fusarium oxysporum – Leveillula taurica – Phytophthora nicotianae – Pyrenochaeta lycopersici – Pythium spp. – Rhizoctonia solani – Slerotinia sclerotiorum – Verticillium spp. | |
| wirusy i organizmy wirusopodobne: – wszystkie, w szczególności wirus mozaiki ogórka, wirus X ziemniaka, wirus Y ziemniaka, mozaika zwykła tytoniu, wirus mozaiki pomidora i wirus żółtej kędzierzawki liści pomidora | |
| – Rheum spp. | bakterie: – Agrobacterium tumefaciens – Erwinia rhapontici |
| grzyby: – Armillariella mellea – Verticillium spp. | |
| wirusy i organizmy wirusopodobne: – wszystkie, w szczególności wirus mozaiki gęsiówki i wirus mozaiki rzepy | |
| – Solanum melongena | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – mącznikowate – mszycowate – Hemitarsonemus latus – Leptinotarsa decemlineata – Meloidogyne spp. – Tetranychidae – przylżeńce, w szczególności Frankliniella occidentalis |
| grzyby: – Fusarium spp. – Leveillula tauricaf. sp. cynara – Rhizoctonia solani – Pythium spp. – Sclerotinia sclerotiorum – Verticillium spp. | |
| wirusy i organizmy wirusopodobne: – wszystkie, w szczególności wirus mozaiki ogórka, wirus mozaiki bakłażana, wirus ziemniaka Y i wirus mozaiki tytoniu |
3. Wymagania dodatkowe dotyczące wytwarzania i jakości materiału nasadzeniowego cebuli (dymki), szalotki i czosnku:
1) materiału nasadzeniowego cebuli (dymki), szalotki i czosnku nie wytwarza się na polu, na którym w okresie ostatnich czterech lat były uprawiane rośliny cebulowe;
2) odległość plantacji cebuli (dymki), szalotki i czosnku od innych upraw gatunków cebulowych powinna być nie mniejsza niż 50 m; odległość ta może być zmniejszona do nie mniej niż 2 m, w przypadku gdy sąsiadująca plantacja jest odpowiednio plantacją cebuli (dymki), szalotki lub plantacją czosnku, spełniającą wymagania dotyczące wytwarzania;
3) na powierzchni 10 m2 nie może występować więcej niż 0,5 rośliny innych odmian;
4) materiał nasadzeniowy cebuli (dymki), szalotki i czosnku pochodzi bezpośrednio z materiału, który w fazie uprawy był poddany ocenie i określony jako praktycznie wolny od jakichkolwiek organizmów szkodliwych i chorób, ich oznak lub objawów;
5) oceny cech zewnętrznych partii cebuli (dymki), szalotki i czosnku wytworzonych na terytorium Rzeczypospolitej Polskiej dokonuje się z uwzględnieniem:
| Lp. | Wyszczególnienie oznak lub objawów występujących | Nie więcej niż |
|
| I. Czosnek | |
| 1 | Cebulki nietypowe dla odmiany | 1,0 |
| 2 | Cebulki o masie mniejszej niż 30 g i średnicy mniejszej niż 3 cm oraz cebulki o masie mniejszej niż 6 g dla odmian zimowych | 3,0 |
| 3 | Cebulki o masie mniejszej niż 20 g i średnicy mniejszej niż 2 cm oraz cebulki o masie mniejszej niż 4 g dla odmian letnich | 5,0 |
| 4 | Cebulki zniekształcone, chore, z uszkodzeniami mechanicznymi lub o silnie spękanej łusce | 1,0 |
|
| II. Cebula i szalotka | |
| 1 | Cebulki porażone Penicillium i innymi chorobami jakościowymi | 1,0 |
| 2 | Cebulki z objawami występowania Sclerotium cepivorum | 0,0 |
| 3 | Cebulki nietypowe dla odmiany | 1,0 |
| 4 | Cebulki uszkodzone | 0,5 |
| 5 | Cebulki pozbawione łuski | 2,0 |
| 6 | Cebulki skiełkowane | 3,0 |
| 7 | Cebulki z zaschniętym szczypiorem dłuższym niż 2 cm | 3,0 |
| 8 | Cebulki z zaschniętymi korzeniami dłuższymi niż 4 cm | 3,0 |
| 9 | Cebulki o niewłaściwej wielkości | 3,0 |
| 10 | Ziemia i inne zanieczyszczenia | 0,5 |
| Łącznie oznaki lub objawy występujących organizmów szkodliwych lub chorób w lp. 1–9 | 5,0 | |
6) sortowanie cebuli:
a) wytworzoną na terytorium Rzeczypospolitej Polskiej partię cebuli producent przed wprowadzeniem do obrotu sortuje na frakcje w przedziale od 5 mm do 25 mm,
b) w jednym opakowaniu może znajdować się tylko jedna frakcja,
c) na opakowaniu umieszcza się informację dotyczącą wielkości cebulek.
Załącznik nr 2
WYMAGANIA W ZAKRESIE WYTWARZANIA I JAKOŚCI MATERIAŁU ROZMNOŻENIOWEGO I MATERIAŁU NASADZENIOWEGO ROŚLIN OZDOBNYCH
1. Wytwarzany materiał rozmnożeniowy i materiał nasadzeniowy powinien mieć:
1) odpowiednią tożsamość i czystość rodzajową lub gatunkową;
2) odpowiednią jednolitość i tożsamość odmianową zgodną z opisem odmiany sporządzonym przez dostawcę zgodnie z przepisami wydanymi na podstawie art. 94 ust. 4 ustawy z dnia 9 listopada 2012 r. o nasiennictwie.
2. Materiał rozmnożeniowy i materiał nasadzeniowy powinien być wolny od organizmów kwarantannowych.
3. Jeżeli materiał rozmnożeniowy stanowią nasiona, powinny one wykazywać odpowiednią dla danego gatunku zdolność kiełkowania.
4. Materiał rozmnożeniowy i materiał nasadzeniowy roślin powinien:
1) być praktycznie wolny od:
a) wad mogących obniżyć jego jakość,
b) organizmów kwarantannowych;
2) charakteryzować się odpowiednią użytecznością, żywotnością oraz mieć właściwe rozmiary i znajdować się w takiej fazie rozwoju, która zapewnia jego przydatność jako materiału rozmnożeniowego i materiału nasadzeniowego;
3) zachowywać odpowiednią proporcję między korzeniami, łodygami i liśćmi;
4) mieć odpowiednią tożsamość, czystość rodzajową, gatunkową lub odmianową zgodną z opisem odmiany, sporządzonym przez dostawcę;
5) być wolny od organizmów kwarantannowych;
6) być praktycznie wolny od następujących organizmów szkodliwych mających wpływ na jakość materiału rozmnożeniowego i materiału nasadzeniowego:
| Rodzaj lub gatunek | Organizmy szkodliwe i choroby |
| – Begonia x hiemalis Fotsch | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – mącznikowate, w szczególności Bemisia tabaci – Aphelenchoides spp. – Ditylenchus destructor – Meloidogyne spp. – Myzus ornatus – Otiorrhynchus sulcatus – Sciara – przylżeńce, w szczególności Frankliniella occidentalis |
| bakterie: – Erwinia chrysanthemi – Rhodococcus fascians – Xanthomonas campestri spv. begoniae | |
| grzyby: – mączniak właściwy – patogeny zgnilizny łodyg (Phytophthora spp., Pythium spp. i Rhizoctonia spp.) | |
| wirusy i organizmy wirusopodobne, w szczególności: – kędzierzawka liści – tospowirusy (wirus brązowej plamistości pomidora, wirus plamistości nekrotycznej niecierpka) | |
| – Cytrusy | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – Aleurothrixus floccosus (Mashell) – Meloidogyne spp. – Parabemisia myricae (Kuwana) – Tylenchulus semipenetrans |
| grzyby: – Phytophthora spp. | |
| wirusy i organizmy wirusopodobne, w szczególności: – wiroidy, takie jak: exocortis, cachexia-xyloporosis – choroby wywołujące psorosis – jak objawy młodych liści, takie jak: psorosis, ring spot, cristacortis, impietratura, concave gum – różnobarwność zakaźna – wirus szorstkości liści cytrusowych | |
| – Dendranthema x Grandiflorum (Ramat) Kitam | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – miniarkowate – mącznikowate, w szczególności Bemisia tabaci, Aphelencoides spp. i Diarthronomia chrysanthemi – łuskoskrzydłe, w szczególności Cacoecimorpha pronubana, Epichoristodes acerbella – przylżeńce, w szczególności Frankliniella occidentalis |
| bakterie: – Agrobacterium tumefaciens – Erwinia chrysanthemi | |
| grzyby: – Fusarium oxisporum spp. chrysanthemi – Puccinia chrysanthemi – Pythium spp. – Rhizoctonia solani – Verticillium spp. | |
| wirusy i organizmy wirusopodobne, w szczególności: – wirus mozaiki B chryzantemy – tomato aspermy cucumovirus | |
| – Dianthus Caryophyllus L. i hybryda | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – miniarkowate – mącznikowate, w szczególności Bemisia tabaci – przylżeńce, w szczególności Frankliniella occidentalis – łuskoskrzydłe, w szczególności Cacoecimorpha pronubana, Epichoristodes acerbella |
| grzyby: – Alternaria dianthi – Alternaria dianthicola – Fusarium oxisporumf. spp. dianthi – Mycosphaerella dianthi – Phytophthora nicotiana spp. parasitica – Rhizoctonia solani – zgnilizna łodyg Fusarium spp. i Pythium spp. – Uromyces dianthi | |
| wirusy i organizmy wirusopodobne, w szczególności: – wirus wżerkowej pierścieniowej plamistości goździka – wirus pstrości goździka – wirus drobnej nekrotycznej plamistości goździka – tospowirusy (wirus brązowej plamistości pomidora, wirus plamistości nekrotycznej niecierpka) | |
| – Euforbia pulcherrima (Wild ex Kletzch) | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – mącznikowate, w szczególności Bemisia tabaci |
| bakterie: – Erwinia chrysanthemi | |
| grzyby: – Fusarium spp. – Pythium ultimum – Pytophthora spp. – Rhizoctonia solani – Thielaviopsis basicola | |
| wirusy i organizmy wirusopodobne, w szczególności: – tospowirusy (wirus brązowej plamistości pomidora, wirus plamistości nekrotycznej niecierpka) | |
| – Gerbera L. | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – miniarkowate – mącznikowate, w szczególności Bemisia tabaci – Aphelencoides spp. – Lapidoptera – Meloidogyne – przylżeńce, w szczególności Frankliniella occidentalis |
| grzyby: – Fusarium spp. – Phytophthora cryptogea – mączniak – Rhizoctonia solani – Verticillium spp. | |
| wirusy i organizmy wirusopodobne, w szczególności: – tospowirusy (wirus brązowej plamistości pomidora, wirus plamistości nekrotycznej niecierpka) | |
| – Gladiolus L. | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – Ditylenchus dipsaci – przylżeńce, w szczególności Frankliniella occidentalis |
| bakterie: – Pseudomonas marginata – Rhodococcus fascians | |
| grzyby: – Botrytis gladiolorum – Curvularia trifolii – Fusarium oxisporum spp. gladioli – Pénicillium gladioli – Sclerotinia spp. – Septoria gladioli – Urocystis gladiolicola – Uromyces trasversalis | |
| wirusy i organizmy wirusopodobne, w szczególności: – fitoplazmowa żółtaczka astra – czynnik korkowatości rdzenia łodygi – wirus mozaiki ogórka – wirus pierścieniowej plamistości mieczyka (syn. utajony wirus narcyza białego) – wirus nekrotycznej kędzierzawki tytoniu | |
| inne organizmy szkodliwe: – Cyperus esculentus | |
| – Lilium L. | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – Aphelenchoides spp. – Rhysoglyphus spp. – Pratylenchus penetrans – Rotylenchus robustus – przylżeńce, w szczególności Frankliniella occidentalis |
| bakterie: – Envinia carotovora podg. carotovora – Rhodococcus fascians | |
| grzyby: – Cylindrocarpon destructans – Fusarium oxisporum f. sp. lilii – Pythium spp. – Rhizoctonia spp. – Rhizopus spp. – Sclerotium spp. | |
| wirusy i organizmy wirusopodobne, w szczególności: – wirus mozaiki ogórka – wirus bezobjawowy lilii – wirus X lilii – wirus nekrotycznej kędzierzawki tytoniu – wirus pstrości tulipana | |
| inne organizmy szkodliwe – Cyperus esculentus | |
| – Malus Miller | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – Anarsia lineatella – Eriosoma lanigerum – czerwce, w szczególności Epidiaspis leperii, Pseudaulacaspis pentagona i Quadraspidiotus perniciosus |
| bakterie: – Agrobacterium tumefaciens – Pseudomonas syringae pv. syringae | |
| grzyby: – Armillariella mellea – Chondrostereum purpureum – Nectria galligena – Phytophtora cactorum – Rosellinia necatrix – Venturia spp. – Verticillium spp. | |
| wirusy i organizmy wirusopodobne: – wszystkie | |
| – Narcissus L. | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – Aphelenchoides subtenuis – Ditylenchus destructor – Eumerus spp. – Merodon equestris – Pratylenchus penetrant – rozkruszkowate – trójpazurkowce |
| grzyby: – Fusarium oxysporum f. sp. narcissi – Sclerotinia spp. – Sclerotium bulborum | |
| wirusy i organizmy wirusopodobne, w szczególności: – wirus nekrotycznej kędzierzawki tytoniu – czynnik srebrzystej smugowatości narcyza – wirus żółtej pasiastości narcyza | |
| inne organizmy szkodliwe – Cyperus esculentus | |
| – Pelargonium L. | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – mącznikowate, w szczególności Bemisia tabaci – łuskoskrzydłe – przylżeńce, w szczególności Frankliniella occidentalis |
| bakterie: – Rhodococcus fascians – Xanthomonas campestris pv. pelargonii | |
| grzyby: – Puccinia pelargonii zonalis – patogeny zgnilizny łodyg (Botrytis spp., Pythium spp.) – Verticillium spp. | |
| wirusy i organizmy wirusopodobne, w szczególności: – wirus pstrokatości pelargonii – wirus kędzierzawki pelargonii – wirus wstęgowej mozaiki pelargonii – tospowirusy (wirus brązowej plamistości pomidora, wirus plamistości nekrotycznej niecierpka) | |
| – Phoenix | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – przylżeńce |
| grzyby: – Exosporium palmivorum – Gliocladium wermoeseni – Graphiola phoenicis – Pestalozzia Phoenicis – Pythium spp. | |
| wirusy i organizmy wirusopodobne: – wszystkie | |
| – Pinus nigra | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – Blastophaga spp. – Rhyacionia buoliana |
| grzyby: – Ophodermium seditiosum | |
| wirusy i organizmy wirusopodobne, w szczególności: – wszystkie | |
| – Prunus L. | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – Capnodis tenebrionis – Meloidogyne spp. – czerwce, w szczególności Epidiaspis leperii, Pseudaulacaspis pentagona i Quadraspidiotus perniciosus |
| bakterie: – Agrobacterium tumefaciens – Pseudomonas syringae pv. mors prunorum – Pseudomonas syringae pv. syringae | |
| grzyby: – Armillariella mellea – Chondrostereum purpureum – Nectria galligena – Rosellinia necatrix – Taphrina deformans – Verticillium spp. | |
| wirusy i organizmy wirusopodobne, w szczególności: – wirus karłowatości śliwy – wirus nekrotycznej pierścieniowej plamistości śliwy | |
| – Pyrus L. | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – Anarsia lineatella – Eriosoma lanigerum – czerwce, w szczególności Epidiaspis leperii, Pseudaulacaspis pentagona i Quadraspidiotus perniciosus |
| bakterie: – Agrobacterium tumefaciens – Pseudomonas syringae pv. syringae | |
| grzyby: – Armillariella mellea – Chondrostereum purpureum – Nectria galligena – Phytophthora spp. – Rosellinia necatrix – Verticilliun spp. | |
| wirusy i organizmy wirusopodobne: – wszystkie | |
| – Rosa | owady, roztocza i nicienie we wszystkich stadiach rozwoju: – łuskoskrzydłe, w szczególności Epichoristodes acerbella, Cacoecimorpha pronubana – Meloidogyne spp. – Pratylenchus spp. – Tetranychus urticae |
| bakterie: – Agrobacterium tumefaciens | |
| grzyby: – Chondrostereum purpureum – Choristoneura spp. – Diplocarpon rosae – Peronospora sparsa – Phragmidium spp. – Rosellinia necatrix – Sphaeroteca pannosa – Verticillium spp. | |
| wirusy i organizmy wirusopodobne, w szczególności: – wirus mozaiki jabłka – wirus mozaiki gęsiówki – wirus nekrotycznej pierścieniowej plamistości śliwy |
Załącznik nr 3
WYMAGANIA W ZAKRESIE WYTWARZANIA I JAKOŚCI SADZONEK WINOROŚLI
I. Wytwarzanie
1. Izolacja przestrzenna: mateczniki i szkółki winorośli powinny być położone w odległości nie mniejszej niż 10 m od roślin dziko rosnących lub uprawnych z rodzaju Vitis.
2. Czystość gatunkowa i odmianowa:
1) wymagana jest pełna czystość gatunkowa i odmianowa sadzonek winorośli;
2) sadzonki winorośli mogą być roślinami własnokorzeniowymi lub szczepionymi na podkładkach odpornych na filokserę winiec.
3. Wiek:
1) mateczniki winorośli utrzymuje się do 15 lat;
2) sadzonki winorośli w szkółkach nie mogą być starsze niż trzyletnie.
4. Zdrowotność
Rośliny mateczne i sadzonki winorośli powinny być:
1) wolne od organizmów kwarantannowych;
2) praktycznie wolne od organizmów, które mogą obniżyć jakość sadzonek winorośli – na podstawie oceny wizualnej.
II. Jakość
Materiał rozmnożeniowy winorośli powinien spełniać wymagania jakościowe:
1) mieć pełną czystość gatunkową i odmianową;
2) mieć właściwy wygląd dla danego gatunku i odmiany;
3) być wolny od organizmów kwarantannowych;
4) być praktycznie wolny od:
a) uszkodzeń fizycznych, mechanicznych lub chemicznych,
b) wad wynikających z rozmnażania, które mogłyby obniżyć jego przydatność i jakość jako materiału rozmnożeniowego,
c) organizmów, które mogą obniżyć jakość sadzonek winorośli;
5) być przygotowany w postaci jednorodnych partii;
6) średnica pędu powinna wynosić nie mniej niż 4 mm, mierząc u nasady pędu;
7) powinien mieć:
a) minimum jeden pęd o długości co najmniej 20 cm, mierząc od nasady do jego wierzchołka,
b) nie mniej niż 3 korzenie szkieletowe o długości co najmniej 15 cm albo
c) wiązkę korzeni drobnych nie krótszych niż 6 cm – dla sadzonek wykopywanych ze szkółki, albo
d) korzenie przerastające całą objętość gleby – dla sadzonek utrzymywanych w pojemnikach.
- Data ogłoszenia: 2017-08-24
- Data wejścia w życie: 2017-09-08
- Data obowiązywania: 2018-09-12
- Dokument traci ważność: 2019-08-22
REKLAMA
Dziennik Ustaw
REKLAMA
REKLAMA